一、壳聚糖保鲜液对唐菖蒲切花保鲜的影响（论文文献综述）
陈国伟[1]（2021）在《芍药切花采后保鲜技术研究》文中研究说明芍药（Paeonia lactiflora Pall.）是芍药科芍药属的多年生草本植物,花型、花色、茎叶等观赏性状优良,适合作为花坛、花境、切花栽培。芍药花期短且集中,造成芍药切花只在5～7月集中供应,加之其自然瓶插寿命很短暂,这些严重制约其产业的发展。我国切花采后技术研究主要集中在大宗和传统花卉,对于芍药切花的研究较少,加之其品种繁多,各品种之间差异大,衰老机理更为复杂,需要深入探究。同时,我国芍药切花产业发展尚不健全,采后处理和采后保鲜多凭经验,更是缺少高效、环保、廉价、通用型的芍药切花保鲜剂。本研究以几种适合作切花的芍药品种为试验材料,以蔗糖+8-HQ为基本液,选择植物激素、杀菌剂、有机酸等成分,采用单因素和响应面分析,筛选并优化预处液和保鲜液配方,在此基础上,观测芍药切花瓶插品质及生理生化特性,以探究芍药切花衰老机制,为完善芍药切花采后保鲜技术提供科学依据和技术指导。主要研究结果如下:1.芍药切花采收后预处理可以显着延长其长时间贮藏和远距离运输后的瓶插寿命,提高后期销售和消费的观赏质量。单因素筛选结果显示,植物激素6-BA效果最好,杀菌剂NS效果最好,有机酸CA效果最好。最佳单因素保鲜效果由大到小的排序为6-BA>NS>CA>CK。其中6-BA显着优于其他化学成分,分别将贮运后‘雪峰’、‘山河红’、‘英雄花’和‘种生粉’的寿命延长21.8%、23.9%、20.1%、10.9%。基于响应面法优化得到的预处液配方为3%蔗糖+200 mg/L 8-HQ+6.88 mg/L 6-BA+15.4 mg/L NS+200.97mg/L CA,该配方可延长芍药切花寿命3.76 d。2.优化预处液对芍药切花品种‘雪峰’、‘山河红’、‘英雄花’和‘种生粉’贮运后的瓶插寿命分别延长30.7%、33.4%、31.6%、31.3%,最佳观赏期分别延长32.0%、43.5%、40.4%、31.8%,调节芍药切花水分平衡状态,降低瓶插期间MDA、Pro含量,提高SOD、POD等酶的含量,该配方可有效缓解贮运后的切花衰老,适宜作为通用型预处液在芍药切花产业中推广和使用。3.芍药切花保鲜液各化学成分单因素筛选试验表明,最佳成分为6-BA、NS、CA、花利多,对瓶插寿命的影响由大到小为NS>6-BA>花利多>CA>CK,杀菌剂NS对芍药切花瓶插寿命的影响最大,分别将贮运后‘雪峰’、‘山河红’、‘英雄花’和‘种生粉’的寿命延长21.8%、23.9%、20.1%、10.9%。基于响应面法得到的芍药切花保鲜液优化配方为2%蔗糖+200 mg/L 8-HQ+7.84 mg/L 6-BA+19.35 mg/L NS+193.32 mg/L CA+304.69 mg/L花利多,该配方理论保鲜寿命为13.6 d,验证结果为12.6 d。4.优化保鲜液配方将‘雪峰’、‘山河红’、‘英雄花’和‘种生粉’瓶插保鲜寿命分别延长34.3%、37.5%、33.3%、40.7%,最佳观赏期分别延长47%、42.3%、46.9%、45.1%,最大花径增加28.8%、25.4%、26.6%、30.7%,该配方对芍药切花瓶插品质和生理特性的调控作用也要优于对照（蒸馏水）,提高切花的可溶性蛋白质含量,增强抗氧化酶防御体系,降低MDA、Pro等含量,延缓衰老,提升瓶插品质。5.本研究基于单因素及响应面分析,得到效果良好的芍药切花预处液配方和保鲜液配方,分别为:3%蔗糖+200mg/L 8-HQ+6.9 mg/L 6-BA+15.5 mg/L NS+201 mg/L CA;保鲜液2%蔗糖+200mg/L 8-HQ+7.8 mg/L 6-BA+19.5 mg/L NS+193 mg/L CA+305 mg/L花利多,可在芍药切花贮运前的预处理阶段和瓶插保鲜阶段进行使用。
李媛[2]（2021）在《保鲜剂、瓶插液pH和冷藏处理对八仙花切花采后品质的影响》文中认为八仙花（Hydrangea macrophylla）是一种观赏价值很高的植物,其花大而美丽,色彩多样,姿态美丽,品种繁多,花期长,因而广受欢迎。常用于盆花观赏和园林绿化中。近些年来被广泛应用于切花生产,而且八仙花的需求逐年增加,在全世界都很受欢迎。但其花序硕大,花瓣柔软,采收后易脱水,造成切花萎蔫,降低观赏价值,也影响采后运输和保存。这些问题不仅影响八仙花切花的销售,也制约了八仙花切花市场的发展和进一步扩张。本研究以八仙花切花为试验材料,从瓶插保鲜液、pH和贮藏方面探讨其采后保鲜技术。从而延缓八仙花切花的衰老,提高观赏品质,延长瓶插寿命,为八仙花切花的采后保鲜和贮藏提供理论依据。主要结论如下:（1）以两个八仙花品种‘经典红’（Hydrangea macrophylla‘Classic Rood’）和‘阿尔卑斯山’（Hydrangea macrophylla‘Glowing Alps’）为试材,将其采收后放置到盛有不同配方保鲜液的塑料杯中,观测采后品质。结果表明,‘经典红’切花在不同保鲜液中的采后表现均优于‘阿尔卑斯山’,不论是在瓶插寿命还是在采后的观赏评价等级方面。30g/L蔗糖处理加快了两个品种八仙花切花的衰老,缩短瓶插寿命。对于切花‘经典红’和‘阿尔卑斯山’,水杨酸（SA）施用浓度分别为0～20 mg/L和0～15 mg/L时可以延长瓶插寿命。低浓度Ca Cl2浓度为2 g/L有利于两个八仙花品种切花的保鲜,延缓了切花衰老,而高浓度即4 g/L Ca Cl2会缩短瓶插寿命。STS处理都使两个品种八仙花快速枯萎,对八仙花有毒害作用,STS不适合应用于八仙花切花的瓶插保鲜液中。对‘经典红’而言,最佳保鲜液配方为20 g/L蔗糖（S）+200 mg/L 8-羟基喹啉柠檬酸盐（8-HQC）+100 mg/L柠檬酸（CA）+15 mg/L SA,瓶插寿命可达16d,而‘阿尔卑斯山’切花的最佳保鲜液为20 g/L S+200 mg/L 8-HQC+100 mg/L CA+5 mg/L SA,瓶插寿命为11.33d。（2）以‘经典红’为试验材料,探究不同瓶插液pH对‘经典红’切花保鲜效应的影响。结果表明,八仙花切花的瓶插寿命随着瓶插溶液的酸碱度的增加呈现先增加后减少的趋势。当pH值为4.0时,对‘经典红’切花的保鲜效果最佳,能有效延长瓶插寿命,最大花径增加率3.32%,显着减缓花枝鲜重变化,维持水分平衡、降低MDA含量、减缓质膜透性的增加。（3）将‘经典红’切花分别进行低温干藏和蒸馏水湿藏,对八仙花切花分别用蒸馏水、可利鲜、自制保鲜液进行短期和长期贮藏。结果表明,‘经典红’切花直接干藏于冷藏箱中,在24h内枯萎,因此八仙花不适合直接干藏。八仙花切花可分别在（4）蒸馏水和可利鲜溶液中冷藏28.67d和32.33d,但在自制保鲜溶液中的储存寿命只有3d。八仙花切花在蒸馏水和可利鲜中的贮藏时间分别不应超过4周（28d）和3周（21d）,否则会降低切花的采后质量和瓶插寿命。总体而言,八仙花切花‘经典红’更适合在蒸馏水和可利鲜溶液中冷藏,而不适合在自制保鲜液中冷藏。
王茹华,张启发,李晔,吴瑕,雷旭,孙帅楠[3]（2018）在《羧甲基壳聚糖对切花菊瓶插保鲜的效果》文中提出以"黄中黄"切花菊为试材,通过调查瓶插寿命、最大花径、鲜质量变化率和叶绿素含量,分别采用表面涂膜和瓶插液保鲜2种方法,探讨了羧甲基壳聚糖对切花菊的保鲜效果。结果表明:高浓度的羧甲基壳聚糖（如20.0g·L-1）不利于切花菊的保鲜,适当的低浓度处理在一定程度上能改善切花菊的保鲜效果。如1.0g·L-1的喷涂处理或0.5g·L-1的瓶插液处理可以延长切花菊的瓶插寿命1.02.3d;4.0g·L-1喷涂处理和0.1g·L-1瓶插液处理均能增加切花菊花径。并且羧甲基壳聚糖还能减缓切花菊叶片中叶绿素的分解和切花失水现象的发生。
杨景雅[4]（2018）在《绣球切花采后保鲜技术的研究》文中研究说明绣球切花由于其美观大方的造型、丰富的花色、以及团圆美满的象征寓意,近年来被广泛开发用于高端鲜切花。但目前关于绣球花的研究主要集中在栽培管理、生理形态及分类鉴定上,针对其保鲜的研究较少。本试验以绣球切花品种“雪球”为试验材料,从物理保鲜和化学保鲜两个技术层面来开展绣球切花的保鲜研究试验。主要研究结果如下:1.绣球切花预冷处理研究将绣球切花置于6℃的冷库中,冷藏处理1 d、2 d、3 d、4 d,对其瓶插寿命、鲜重变化率、水分平衡值、脯氨酸含量以及丙二醛（MDA）含量进行测定分析。结果表明:在6℃预冷处理条件下处理绣球切花3 d,能在很大程度上优化各生理指标,可使绣球切花的瓶插时间长达25天,提高其观赏品质。2.绣球切花保鲜剂配方的研究首先进行单一碳源（蔗糖、海藻糖、壳聚糖）筛选试验,试验设置了2类保鲜剂成分,一类是有机酸（柠檬酸,水杨酸）,一类是乙烯抑制剂1-甲基环丙烯（1-Methylcyclopropene,1-MCP）。有机酸筛选试验中每种成分设置了4个浓度梯度,乙烯抑制剂设置了4个处理时间梯度,分别进行单因子试验研究。试验结果表明,绣球切花最适合的糖源为12 g/L的蔗糖,最适的有机酸为60 mg/L的柠檬酸,1-MCP的最佳处理时间为3 d。3.对以上筛选出来的最适保鲜剂成分及浓度进行二次正交旋转试验设计,根据瓶插天数为指标,分析糖源、有机酸和乙烯抑制剂对绣球切花保鲜的影响效果,得出最适的保鲜剂配方为:8.36 g/L蔗糖+51.59 mg/L柠檬酸+1-MCP处理2.31 d。该保鲜剂配方能在很大程度上提高绣球切花的观赏水平,可使其瓶插寿命长达35 d,比空白清水对照延长20 d。本试验研究结果可为今后绣球切花的保鲜提供科学的实验依据和有效的技术支持。
王青青[5]（2016）在《两种菌发酵液对非洲菊保鲜及压花花色影响的研究》文中进行了进一步梳理近年来生物保鲜剂在果蔬保鲜的研究上运用得越来越广泛,并取得了很好的研究成果,然而在花卉植物的保鲜应用上鲜有报道。其主要集中在通过分离植物自身内生菌,利用内生菌代谢产物对鲜切花进行保鲜,然而运用一种花卉植物提取分离出来的微生物对另一种花卉植物进行保鲜应用的研究,少之甚少。本文以非洲菊切花红色品种‘世纪红非洲菊’（Gerbera jamesonii‘century red’）为实验材料,运用一种观赏植物中分离提取出的炭疽菌Colletotrichum sp.III（记为A）和炭角菌Xylaria sp.T-4（记为B）的发酵液,对非洲菊切花瓶插保鲜效果的影响进行研究。此外,以非洲菊切花红色品种‘世纪红非洲菊’（Gerbera jamesonii‘century red’）和橙黄色品种‘金太阳非洲菊’（Gerbera jamesonii‘golden sun’）的花瓣为实验材料,研究了两种内生真菌的发酵液对其压花花色的影响。两种内生真菌的发酵液对切花‘世纪红非洲菊’保鲜效果的影响研究实验,主要通过观测其瓶插寿命,测定其鲜重变化率、水分平衡值、POD、CAT酶活性、MDA含量和可溶性蛋白含量等生理指标;两种内生真菌的发酵液对红色和橙黄色非洲菊切花花瓣压花花色影响的研究,主要通过将处理后的花瓣颜色进行分级评分,测定各级花瓣L*a*b*色度值、花色素含量、PPO酶活性等指标。其研究结果如下:（1）五个不同浓度的炭疽菌Colletotrichum sp.III和炭角菌Xylaria sp.T-4发酵液对‘世纪红非洲菊’切花的瓶插寿命影响不同,实验结果表明:5%A处理的瓶插寿命为10天,而CK的瓶插寿命为8天,因此,5%A处理可延长非洲菊切花瓶插寿命2天,且5%A处理结果与1%A、10%A、20%A处理结果存在显着差异（P<0.05）;3%B处理的瓶插寿命为10.67天,且3%B处理结果与1%B、10%B、20%B处理结果存在显着差异（P<0.05）。此外,5%A与3%B比较结果表明,3%B的处理效果最佳,可以延长非洲菊切花瓶插寿命约3天。（2）综合实验结果,5%A发酵液和3%B发酵液在非洲菊切花瓶插过程中,可减缓非洲菊切花鲜重的变化速率、保持其水分平衡、减缓POD活性的降低、提高CAT酶活性、抑制MDA含量的增加以及延缓可溶性蛋白含量的降低,从而延缓非洲菊切花的衰老,延长其瓶插寿命。综合实验结果表明:3%B发酵液从瓶插第4天后保鲜效果优于5%A发酵液。（3）不同浓度的A、B发酵液不同时间浸泡处理两种颜色非洲菊切花花瓣后,‘世纪红非洲菊’可获得a1a7共7个级别不同颜色的压花花瓣;‘金太阳非洲菊’可获得b1b6共6个级别不同颜色的压花花瓣;对不同处理各级别花瓣进行评分后,结果表明:不同处理的总评分均高于CK1和CK2,且随浸泡时间的增加,各处理总评分增加,能获得较高级别的颜色的花瓣;不同浓度的A发酵液处理随浓度的增加总评分越高,而不同浓度的B发酵液处理总评分规律性不明显。（4）红色非洲菊花瓣各级别的L*值大小顺序为a7>a6>a4>a1>a5>a2>a3,a1级别的红色非洲菊花瓣的L*值与a2、a3、a6、a7均存在显着性差异（P<0.05）;a*值大小顺序为a6>a1>a5>a7>a2>a3>a4;b*值大小顺序为a6>a7>a1>a4>a5>a3>a2;红色素含量相对值的大小顺序为a2>a3>a6>a5>a1>a4>a7。橙黄色非洲菊花瓣各级别的L*值大小顺序为b6>b5>b4>b3>b2>b1,b1级别的橙黄色非洲菊花瓣的L*值与其余5个级别的花瓣均呈显着性差异（P<0.05）;a*值大小顺序为b1>b2>b5>b3>b4>b6;b*值大小顺序为b4>b6>b3>b5>b2>b1;黄色素含量相对值的大小顺序为b1>b2>b3>b5>b6>b4。红色7种花瓣中,a6的亮度大而且较红,是理想的压花材料;而黄色6种花瓣中,b5亮度大有红色边,是理想的压花材料。此外,两种颜色的花瓣,随级别的增大PPO活性下降,PPO活性的降低有利于压花花材的保存。（5）运用实验花材设计制作了《红色非洲菊》、《橙黄色非洲菊》、《花篮1》、《花篮2》以及《宇宙与凤凰》共五幅不同类型的压花作品,体现出两种内生真菌发酵液处理非洲菊花瓣的实验花材在不同类型压花作品制作中的优势,五幅作品充分说明实验处理后所得的不同级别花瓣在压花作品的制作中可以丰富作品的色彩以及增强作品的层次感和立体感。
刘柳姣,梁耀平,卢明,黎金玲,陈春燕,刘婷婷[6]（2015）在《3种保鲜剂对鲜切花束的保鲜效果》文中进行了进一步梳理通过在月季、唐菖蒲、菊花、香石竹、非洲菊等世界五大鲜切花花束中添加含有苯甲酸、水杨酸和山梨酸溶液保鲜。与对照比较,能增大花朵直径,延长切花寿命,减少萎蔫、弯头;有增加花瓣含水量、降低花瓣细胞膜相对透性、延缓花瓣蛋白质降解的效果。结果表明,不同处理花束的鲜切花,均有延长切花寿命,提高观赏价值的作用。
曹立波,陈海霞[7]（2015）在《鲜切花化学保鲜剂的研究进展》文中认为介绍了鲜切花采后的生理生化变化特征,化学保鲜剂的成分及其作用机理,为切花采后化学保鲜技术开发提供参考。
韩琴,于勇杰,张晶,戴智慧,倪穗[8]（2015）在《保鲜剂对山茶花切花保鲜效果的研究》文中认为以山茶花为材料,使用20 g/L蔗糖+50 mg/L SA+0.2 mmol/L STS+30 mg/L 6-BA+75 mg/L Al2（SO4）3配制成的保鲜剂,以蒸馏水作为对照,研究保鲜剂对山茶花鲜切花采后生理指标的影响。结果表明:该保鲜剂处理可有效减缓山茶花可溶性糖和蛋白质含量的下降,抑制游离脯氨酸含量、MDA含量以及细胞膜相对透性的上升幅度,延缓POD活性的下降。该保鲜剂具有明显的延缓山茶花鲜切花衰老的效果。
文雨婷[9]（2014）在《不同植物生长调节剂对郁金香切花保鲜效果及机理研究》文中研究表明本文以郁金香切花品种“小王子”为试验材料，在200mg/L8-HQ+20g/L S基础保鲜液的基础上，添加调环酸钙（PHDC）、胺鲜酯（DA-6）、增产胺（DCPTA）、芸苔素内酯（BR）、氯吡脲（KT-30）、三十烷醇（TA）等6种新型植物生长调节剂，并以常用的切花保鲜调节剂苄氨基嘌呤（6-BA）为参照，测定其瓶插寿命、花径、水分平衡值、鲜重变化率等形态指标及可溶性糖含量、可溶性蛋白含量、脯氨酸含量、丙二醛（MDA）含量、超氧阴离子自由基（O-2）产生速率、超氧化物歧化酶（SOD）活性和过氧化氢酶（CAT）活性等生理指标，系统研究了PHDC、DA-6、DCPTA、BR、KT-30、TA对郁金香切花的保鲜效应和作用机理，研究结果如下：（1）随着瓶插时间的推移，郁金香切花的水分平衡值和鲜重变化率呈向下抛物线下降趋势；可溶性糖含量先下降，再上升，最后下降；可溶性蛋白含量则呈先上升，再下降的趋势；脯氨酸含量总体呈先下降，后上升的趋势，或一直保持很低的上升水平；MDA含量和O-2产生速率均呈上升趋势，但MDA的上升趋势稍滞后于O2-产生速率；SOD和CAT活性的变化趋势大体上呈先上升再下降趋势，但不同处理的上升、下降波折次数和时间不同，且有一定的规律性，峰值出现的次数和时间与瓶插寿命的长短存在一定的相关性。不同药剂处理的具体变化趋势又各有不同，与蒸馏水处理间均存在显着性差异。（2）与蒸馏水处理和基础保鲜液处理相比，PHDC、DA-6、DCPTA、BR、KT-30、TA六种植物生长调节剂均能有效地延长瓶插寿命，增大花径，提高水分平衡值，增加鲜重，减缓可溶性糖和可溶性蛋白的下降，减少脯氨酸、MDA的积累，降低O2-产生速率，提高SOD和CAT活性，从而延缓郁金香切花的衰老，提高保鲜度，分别以200mg/L PHDC、10mg/L DA-6、50mg/L DCPTA、1mg/L BR、50mg/L KT-30、1.5mg/L TA处理效果最佳。这六种调节剂处理的最佳浓度效果均优于6-BA处理。其中，50mg/L DCPTA效果最好，瓶插寿命为12.77d，分别比CK-1和CK-2延长6.67d和4.60d；1.5mg/L TA次之，分别比CK-1和CK-2延长6.37d和4.30d；再次之为50mg/L KT-30，分别比CK-1和CK-2延长5.77d和3.70d。（3）郁金香切花瓶插保鲜液的最佳配方：根据各处理的瓶插寿命、观赏品质及各项生理指标结果，本研究筛选出了郁金香切花瓶插保鲜液最佳配方：50mg/L DCPTA+200mg/L8-HQ+20g/L S；1.5mg/L TA+200mg/L8-HQ+20g/L S；50mg/L KT-30+200mg/L8-HQ+20g/L S；1mg/L BR+200mg/L8-HQ+20g/L S；10mg/L DA-6+200mg/L8-HQ+20g/L S。
王婷,李树安,张珍明,齐家娟,赵红博,王璇[10]（2013）在《壳聚糖及其衍生物的保鲜功能应用进展》文中提出壳聚糖是一种丰富的天然氨基多糖,来源丰富,因其独特的结构而具有许多独特的物理化学特性和生物功能。介绍了壳聚糖及其衍生物的特性、在果蔬以及鲜切花保鲜方面的原理,综述了壳聚糖及其衍生物在保鲜方面的功能和应用研究。
二、壳聚糖保鲜液对唐菖蒲切花保鲜的影响（论文开题报告）
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
本文主要提出一款精简64位RISC处理器存储管理单元结构并详细分析其设计过程。在该MMU结构中,TLB采用叁个分离的TLB,TLB采用基于内容查找的相联存储器并行查找,支持粗粒度为64KB和细粒度为4KB两种页面大小,采用多级分层页表结构映射地址空间,并详细论述了四级页表转换过程,TLB结构组织等。该MMU结构将作为该处理器存储系统实现的一个重要组成部分。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
三、壳聚糖保鲜液对唐菖蒲切花保鲜的影响（论文提纲范文）
（1）芍药切花采后保鲜技术研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 前言 |
| 第一章 文献综述 |
| 1.1 芍药的概述 |
| 1.1.1 芍药的生物学特性 |
| 1.1.2 芍药的品种分类 |
| 1.1.3 芍药的价值及应用 |
| 1.1.4 芍药切花产业现状 |
| 1.2 芍药切花保鲜研究进展 |
| 1.2.1 适宜采收期 |
| 1.2.2 采前预处理 |
| 1.2.3 采后保鲜技术 |
| 1.3 切花采后生理研究 |
| 1.3.1 水分代谢 |
| 1.3.2 呼吸代谢 |
| 1.3.3 内源激素变化 |
| 1.3.4 细胞膜透性变化 |
| 1.3.5 酶活性变化 |
| 1.3.6 生物大分子代谢 |
| 1.3.7 其他变化 |
| 1.4 响应面分析法及其应用 |
| 1.5 研究的目的及意义 |
| 1.6 技术路线 |
| 第二章 芍药切花预处液筛选与研究 |
| 2.1 材料与方法 |
| 2.1.1 试验材料 |
| 2.1.2 试验方法 |
| 2.1.3 指标测定与方法 |
| 2.1.4 数据处理 |
| 2.2 结果与分析 |
| 2.2.1 预处液单因素化学成分试验结果 |
| 2.2.2 响应面优化结果与分析 |
| 2.3 讨论 |
| 2.4 小结 |
| 第三章 预处液对不同品种芍药切花瓶插品质和生理特性的影响 |
| 3.1 材料与方法 |
| 3.1.1 试验材料 |
| 3.1.2 试验方法 |
| 3.1.3 指标测定与方法 |
| 3.2 结果与分析 |
| 3.2.1 预处液对不同品种芍药切花瓶插品质的影响 |
| 3.2.2 预处液对不同品种芍药切花水分平衡值的影响 |
| 3.2.3 预处液对不同品种芍药切花MDA、Pro和可溶性蛋白质含量的影响 |
| 3.2.4 预处液对不同品种芍药切花抗氧化酶活性的影响 |
| 3.3 讨论 |
| 3.4 小结 |
| 第四章 芍药切花保鲜液筛选与研究 |
| 4.1 材料与方法 |
| 4.1.1 试验材料 |
| 4.1.2 试验方法 |
| 4.1.3 指标测定与方法 |
| 4.1.4 数据处理 |
| 4.2 结果与分析 |
| 4.2.1 保鲜液单因素化学成分试验结果 |
| 4.2.2 响应面优化结果与分析 |
| 4.3 讨论 |
| 4.4 小结 |
| 第五章 保鲜液对不同品种芍药切花瓶插品质和生理特性的影响 |
| 5.1 材料与方法 |
| 5.1.1 试验材料 |
| 5.1.2 试验方法 |
| 5.1.3 指标测定与方法 |
| 5.2 结果与分析 |
| 5.2.1 保鲜液对不同品种芍药切花瓶插品质的影响 |
| 5.2.2 保鲜液对不同品种芍药切花水分平衡值的影响 |
| 5.2.3 保鲜液对不同品种芍药切花MDA、Pro和可溶性蛋白质含量的影响 |
| 5.2.4 保鲜液对不同品种芍药切花抗氧化酶活性的影响 |
| 5.3 讨论 |
| 5.4 小结 |
| 结论 |
| 参考文献 |
| 附录 |
| 作者简介 |
| 致谢 |
（2）保鲜剂、瓶插液pH和冷藏处理对八仙花切花采后品质的影响（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 第一章 文献综述 |
| 1.1 八仙花研究概述 |
| 1.1.1 八仙花的生物学特性 |
| 1.1.2 八仙花的栽培历史 |
| 1.1.3 八仙花的应用价值 |
| 1.2 切花保鲜技术研究 |
| 1.2.1 切花化学保鲜研究进展 |
| 1.2.2 切花物理保鲜研究进展 |
| 1.2.3 八仙花切花保鲜技术研究 |
| 1.3 研究目的和意义 |
| 1.4 技术路线 |
| 第二章 不同保鲜液配方对八仙花切花采后瓶插品质的影响 |
| 2.1 试验材料 |
| 2.2 试验方法 |
| 2.2.1 试验设计 |
| 2.2.2 观测指标测定 |
| 2.2.3 数据分析 |
| 2.3 结果与分析 |
| 2.3.1 不同浓度蔗糖对八仙花切花保鲜效果的影响 |
| 2.3.2 不同浓度8-HQC对八仙花切花保鲜效果的影响 |
| 2.3.3 不同浓度水杨酸对八仙花切花保鲜效果的影响 |
| 2.3.4 不同浓度柠檬酸对八仙花切花保鲜效果的影响 |
| 2.3.5 不同浓度氯化钙(CaCl_2)对八仙花切花保鲜效果的影响 |
| 2.3.6 不同浓度硫代硫酸银(STS)对八仙花切花保鲜效果的影响 |
| 2.4 讨论 |
| 第三章 不同pH保鲜液对八仙花切花保鲜效果的影响 |
| 3.1 试验材料 |
| 3.2 试验方法 |
| 3.2.1 试验设计 |
| 3.2.2 指标测定 |
| 3.2.3 数据分析 |
| 3.3 结果与分析 |
| 3.3.1 不同pH瓶插液对八仙花切花瓶插寿命的影响 |
| 3.3.2 不同pH瓶插液对八仙花切花形态变化的影响 |
| 3.3.3 不同pH瓶插液对八仙花切花花冠径和瓶插溶液pH的影响 |
| 3.3.4 不同pH瓶插液对八仙花切花鲜重变化和水分平衡的影响 |
| 3.3.5 不同pH瓶插液对八仙花切花质膜稳定性的影响 |
| 3.4 讨论 |
| 第四章 冷藏时间和冷藏方式对八仙花切花保鲜效果的影响 |
| 4.1 试验材料 |
| 4.2 试验方法 |
| 4.2.1 试验设计 |
| 4.2.2 指标测定 |
| 4.2.3 数据分析 |
| 4.3 结果与分析 |
| 4.3.1 干藏对八仙花切花采后性能的影响 |
| 4.3.2 不同冷藏液对八仙花切花贮藏寿命的影响 |
| 4.3.3 不同冷藏溶液和冷藏时间对八仙花切花瓶插寿命的影响 |
| 4.3.4 不同冷藏时间对八仙花切花保鲜品质的影响 |
| 4.3.5 不同冷藏时间对八仙花切花鲜重的影响 |
| 4.4 讨论 |
| 第五章 结论与展望 |
| 5.1 结论 |
| 5.2 展望 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
| 个人简历 |
（3）羧甲基壳聚糖对切花菊瓶插保鲜的效果（论文提纲范文）
| 1 材料与方法 |
| 1.1 试验材料 |
| 1.2 试验方法 |
| 1.2.1 保鲜液配制 |
| 1.2.2 处理方法 |
| 1.3 项目测定 |
| 1.4 数据分析 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 羧甲基壳聚糖对切花菊瓶插寿命的影响 |
| 2.2 羧甲基壳聚糖对切花菊花径的影响 |
| 2.3 羧甲基壳聚糖对切花菊叶绿素含量的影响 |
| 2.4 羧甲基壳聚糖对切花菊鲜质量变化率的影响 |
| 3 结论与讨论 |
（4）绣球切花采后保鲜技术的研究（论文提纲范文）
| 中文摘要 |
| Abstract |
| 1 绪论 |
| 1.1 绣球切花概述 |
| 1.1.1 绣球切花的生物学特征概述 |
| 1.1.2 绣球切花生产现状 |
| 1.2 切花采后衰老机理 |
| 1.2.1 鲜切花衰老过程中水分代谢的研究 |
| 1.2.2 鲜切花在衰老过程中的呼吸作用与乙烯的变化情况 |
| 1.2.3 鲜切花衰老过程中生物大分子的物质代谢变化 |
| 1.2.4 鲜切花衰老过程中细胞膜透性的变化 |
| 1.2.5 鲜切花衰老过程中植物激素的变化 |
| 1.3 鲜切花保鲜技术研究现状 |
| 1.3.1 切花物理保鲜技术研究 |
| 1.3.2 切花化学保鲜技术研究 |
| 1.4 绣球切花保鲜研究现状 |
| 1.4.1 绣球切花研究现状 |
| 1.4.2 本研究的目的及意义 |
| 2 物理、化学处理方法对绣球切花保鲜的影响 |
| 2.1 预冷处理对绣球切花保鲜的影响 |
| 2.1.1 试验材料 |
| 2.1.2 试验方法 |
| 2.1.3 结果与分析 |
| 2.1.4 结果与讨论 |
| 2.2 化学保鲜剂对绣球切花保鲜的影响 |
| 2.2.1 不同糖源对绣球切花保鲜的影响 |
| 2.2.2 不同有机酸对绣球切花保鲜的影响 |
| 2.2.3 1-MCP处理对绣球切花保鲜的影响 |
| 2.3 三种化学试剂正交旋转试验 |
| 2.3.1 试验设计与结果 |
| 3 结论与展望 |
| 3.1 预冷处理对绣球切花保鲜效果的影响 |
| 3.2 单一化学试剂对绣球切花保鲜的影响 |
| 3.2.1 糖源对“雪球”绣球切花保鲜的影响 |
| 3.2.2 有机酸对“雪球”绣球切花保鲜的影响 |
| 3.2.3 乙烯抑制剂对“雪球”绣球切花保鲜的影响 |
| 3.3 糖源、有机酸和乙烯抑制剂共同作用对绣球切花的影响 |
| 3.4 展望 |
| 参考文献 |
| 附录 |
| 致谢 |
（5）两种菌发酵液对非洲菊保鲜及压花花色影响的研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 英文缩略词及英汉对照 |
| 1 前言 |
| 1.1 植物内生真菌及其活性物质的研究现状 |
| 1.1.1 植物内生真菌 |
| 1.1.2 植物内生真菌次生代谢产物的研究 |
| 1.2 植物内生菌的应用研究现状 |
| 1.3 非洲菊切花保鲜的研究现状 |
| 1.3.1 非洲菊切花的衰老机理 |
| 1.3.2 鲜切花保鲜的研究进展 |
| 1.3.2.1 物理保鲜技术 |
| 1.3.2.2 化学保鲜技术 |
| 1.3.2.3 生物保鲜技术 |
| 1.3.3 非洲菊切花保鲜研究进展 |
| 1.4 压花花色的研究现状 |
| 1.4.1 压花及压花艺术简介 |
| 1.4.2 压花花色研究进展 |
| 1.4.3 CIE1976L~*a~*b~*均匀颜色空间的简介 |
| 1.5 印象派油画色彩应用的发展 |
| 1.6 研究的目的和意义 |
| 2 材料与方法 |
| 2.1 实验材料 |
| 2.1.1 菌种 |
| 2.1.2 培养基 |
| 2.1.3 花卉品种 |
| 2.2 主要仪器与试剂 |
| 2.2.1 主要仪器 |
| 2.2.2 主要试剂 |
| 2.3 实验方法与步骤 |
| 2.3.1 Colletotrichum sp. Ⅲ和Xylaria sp. T-4 发酵液的制备 |
| 2.3.2 Colletotrichum sp. Ⅲ和Xylaria sp. T-4 发酵液对非洲菊保鲜的研究 |
| 2.3.2.1 实验材料 |
| 2.3.2.2 花材处理 |
| 2.3.2.3 非洲菊切花保鲜最佳浓度发酵液的选择 |
| 2.3.3 Colletotrichum sp. Ⅲ和Xylaria sp. T-4 发酵液对非洲菊压花花色影响的研究 |
| 2.3.3.1 实验材料 |
| 2.3.3.2 不同处理对非洲菊压花花色的影响 |
| 2.3.3.3 处理干制后花材颜色分级评分 |
| 2.3.3.4 各级花瓣色度值、花色素相对含量以及PPO活性的测定 |
| 2.3.3.5 处理花材在压花作品制作中的优势体现 |
| 2.4 实验数据结果统计与分析方法 |
| 3 结果与分析 |
| 3.1 Colletotrichum sp. Ⅲ和Xylaria sp. T-4 发酵液对非洲菊瓶插效果的影响 |
| 3.1.1 不同处理对非洲菊瓶插寿命的影响 |
| 3.1.2 不同处理对非洲菊鲜重变化率的影响 |
| 3.1.3 不同处理对非洲菊水平衡值的影响 |
| 3.1.4 不同处理对非洲菊POD活性的影响 |
| 3.1.5 不同处理对非洲菊CAT活性的影响 |
| 3.1.6 不同处理对非洲菊MDA含量的影响 |
| 3.1.7 不同处理对非洲菊可溶性蛋白含量的影响 |
| 3.2 Colletotrichum sp. Ⅲ和Xylaria sp. T-4 发酵液对非洲菊压花花色的影响 |
| 3.2.1 不同处理的非洲菊花瓣压制干燥后的分级评分结果 |
| 3.2.2 各级颜色花瓣的L~*a~*b~*色度值 |
| 3.2.3 各级颜色花瓣的花色素相对含量 |
| 3.2.4 各级颜色花瓣的PPO活性 |
| 3.2.5 实验花材在压花作品制作中的优势体现 |
| 4 讨论与结论 |
| 4.1 讨论 |
| 4.1.1 内生菌代谢产物在切花保鲜上的应用 |
| 4.1.2 两种内生真菌发酵液对非洲菊压花花色的影响 |
| 4.1.3 不同颜色非洲菊花瓣在压花作品制作中的应用 |
| 4.2 结论 |
| 4.3 本研究的创新点 |
| 致谢 |
| 参考文献 |
| 附录 在读期间获奖情况 |
（6）3种保鲜剂对鲜切花束的保鲜效果（论文提纲范文）
| 1 材料与方法 |
| 1.1 试验材料和用品 |
| 1.2 试验时间和地点 |
| 1.3 试验方法 |
| 1.4 试验步骤 |
| 1.4.1 形态指标 |
| 1.4.2 生理检测 |
| 1.4.2. 1 花瓣水分含量测定 |
| 1.4.2. 2 花瓣细胞膜透性测定 |
| 1.4.2. 3 花瓣蛋白质含量测定 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 不同保鲜液处理对鲜切花平均直径及寿命的影响 |
| 2.2 不同处理对鲜切花花瓣含水量的影响 |
| 2.3 不同处理对鲜切花花瓣蛋白质含量的影响 |
| 2.4 不同处理对五大鲜切花花瓣细胞膜透性的影响 |
| 3 讨论与结论 |
（7）鲜切花化学保鲜剂的研究进展（论文提纲范文）
| 1切花采后的生理生化变化 |
| 1.1水分的变化 |
| 1.2酶活性的变化 |
| 1.3可溶性糖的变化 |
| 1.4pH值的变化 |
| 1.5生物膜的变化 |
| 1.6激素的变化 |
| 2化学保鲜剂的研究现状 |
| 2.1保鲜剂的种类 |
| 2.2保鲜剂的成分及作用 |
| 3结语 |
（8）保鲜剂对山茶花切花保鲜效果的研究（论文提纲范文）
| 1 材料与方法 |
| 1. 1 试验材料 |
| 1. 2 试验方法 |
| 2 结果与分析 |
| 2. 1 保鲜剂对山茶鲜切花可溶性糖含量的影响 |
| 2. 2 保鲜剂对山茶鲜切花可溶性蛋白含量的影响 |
| 2. 3 保鲜剂对山茶鲜切花游离脯氨酸含量的影响 |
| 2. 4 保鲜剂对山茶鲜切花 MDA 含量的影响 |
| 2. 5 保鲜剂对山茶鲜切花 POD 活性的影响 |
| 2. 6 保鲜剂对山茶鲜切花细胞膜相对透性的影响 |
| 3 讨 论 |
（9）不同植物生长调节剂对郁金香切花保鲜效果及机理研究（论文提纲范文）
| 致谢 |
| 摘要 |
| 1 文献综述 |
| 1.1 鲜切花采后生理及保鲜技术 |
| 1.1.1 鲜切花概述 |
| 1.1.1.1 鲜切花的种类 |
| 1.1.1.2 鲜切花的采收 |
| 1.1.1.3 鲜切花的品质及分级标准 |
| 1.1.2 鲜切花采后生理概述 |
| 1.1.2.1 形态变化 |
| 1.1.2.2 呼吸生理 |
| 1.1.2.3 水分生理 |
| 1.1.2.4 物质代谢 |
| 1.1.2.5 活性氧平衡 |
| 1.1.2.6 激素变化 |
| 1.1.3 鲜切花保鲜技术 |
| 1.1.3.1 物理保鲜 |
| 1.1.3.2 化学保鲜 |
| 1.1.3.3 基因工程保鲜 |
| 1.2 植物生长调节剂对切花保鲜的影响 |
| 1.2.1 植物生长物质 |
| 1.2.2 植物激素 |
| 1.2.3 植物生长调节剂概述 |
| 1.2.3.1 植物生长调节剂的分类及作用机理 |
| 1.2.3.2 植物生长调节剂的作用特点 |
| 1.2.3.3 植物生长调节剂在生产中的应用 |
| 1.2.4 植物生长调节剂在切花保鲜中的应用 |
| 1.2.4.1 植物生长促进剂在切花保鲜中的应用 |
| 1.2.4.2 植物生长延缓剂在切花保鲜中的应用 |
| 1.2.4.3 植物生长抑制剂在切花保鲜中的应用 |
| 1.2.4.4 植物生长调节剂复配在切花保鲜中的应用 |
| 1.3 郁金香切花保鲜 |
| 1.3.1 郁金香概述 |
| 1.3.1.1 郁金香的生物学特征 |
| 1.3.1.2 郁金香的分类 |
| 1.3.1.3 郁金香的生长习性 |
| 1.3.1.4 郁金香的起源与分布 |
| 1.3.1.5 郁金香的观赏价值和意义 |
| 1.3.2 郁金香切花的采收技术 |
| 1.3.2.1 郁金香切花的采收 |
| 1.3.2.2 郁金香切花的分级 |
| 1.3.2.3 郁金香切花的包装运输 |
| 1.3.3 郁金香切花保鲜研究现状 |
| 2 引言 |
| 3 材料与方法 |
| 3.1 试验材料 |
| 3.1.1 供试材料 |
| 3.1.2 供试药剂 |
| 3.1.3 试验仪器 |
| 3.2 试验处理 |
| 3.3 试验测定指标与方法 |
| 3.3.1 形态指标的测定 |
| 3.3.1.1 瓶插寿命 |
| 3.3.1.2 花径 |
| 3.3.1.3 水分平衡值 |
| 3.3.1.4 鲜重变化率 |
| 3.3.2 生理指标测定 |
| 3.3.2.1 可溶性糖含量测定 |
| 3.3.2.2 可溶性蛋白含量测定 |
| 3.3.2.3 脯氨酸含量测定 |
| 3.3.2.4 丙二醛（MDA）含量测定 |
| 3.3.2.5 超氧阴离子自由基（O_2~-）产生速率测定 |
| 3.3.2.6 SOD 活性测定 |
| 3.3.2.7 CAT 活性测定 |
| 3.4 数据处理与统计分析 |
| 4 结果与分析 |
| 4.1 不同植物生长调节剂对郁金香切花瓶插寿命及最大花径的影响 |
| 4.2 不同植物生长调节剂对郁金香切花水分平衡值和鲜重变化率的影响 |
| 4.2.1 不同植物生长调节剂对郁金香切花水分平衡值的影响 |
| 4.2.1.1 不同浓度 PHDC 对郁金香切花水分平衡值的影响 |
| 4.2.1.2 不同浓度 DA-6 对郁金香切花水分平衡值的影响 |
| 4.2.1.3 不同浓度 DCPTA 对郁金香切花水分平衡值的影响 |
| 4.2.1.4 不同浓度 BR 对郁金香切花水分平衡值的影响 |
| 4.2.1.5 不同浓度 KT-30 对郁金香切花水分平衡值的影响 |
| 4.2.1.6 不同浓度 TA 对郁金香切花水分平衡值的影响 |
| 4.2.1.7 不同浓度 6-BA 对郁金香切花水分平衡值的影响 |
| 4.2.2 不同植物生长调节剂对郁金香切花鲜重变化率的影响 |
| 4.2.2.1 不同浓度 PHDC 对郁金香切花鲜重变化率的影响 |
| 4.2.2.2 不同浓度 DA-6 对郁金香切花鲜重变化率的影响 |
| 4.2.2.3 不同浓度 DCPTA 对郁金香切花鲜重变化率的影响 |
| 4.2.2.4 不同浓度 BR 对郁金香切花鲜重变化率的影响 |
| 4.2.2.5 不同浓度 KT-30 对郁金香切花鲜重变化率的影响 |
| 4.2.2.6 不同浓度 TA 对郁金香切花鲜重变化率的影响 |
| 4.2.2.7 不同浓度 6-BA 对郁金香切花鲜重变化率的影响 |
| 4.3 不同植物生长调节剂对郁金香切花可溶性糖和可溶性蛋白含量的影响 |
| 4.3.1 不同植物生长调节剂对郁金香切花可溶性糖含量的影响 |
| 4.3.1.1 不同浓度 PHDC 对郁金香切花可溶性糖含量的影响 |
| 4.3.1.2 不同浓度 DA-6 对郁金香切花可溶性糖含量的影响 |
| 4.3.1.3 不同浓度 DCPTA 对郁金香切花可溶性糖含量的影响 |
| 4.3.1.4 不同浓度 BR 对郁金香切花可溶性糖含量的影响 |
| 4.3.1.5 不同浓度 KT-30 对郁金香切花可溶性糖含量的影响 |
| 4.3.1.6 不同浓度 TA 对郁金香切花可溶性糖含量的影响 |
| 4.3.2 不同植物生长调节剂对郁金香切花可溶性蛋白含量的影响 |
| 4.3.2.1 不同浓度 PHDC 对郁金香切花可溶性蛋白含量的影响 |
| 4.3.2.2 不同浓度 DA-6 对郁金香切花可溶性蛋白含量的影响 |
| 4.3.2.3 不同浓度 DCPTA 对郁金香切花可溶性蛋白含量的影响 |
| 4.3.2.4 不同浓度 BR 对郁金香切花可溶性蛋白含量的影响 |
| 4.3.2.5 不同浓度 KT-30 对郁金香切花可溶性蛋白含量的影响 |
| 4.3.2.6 不同浓度 TA 对郁金香切花可溶性蛋白含量的影响 |
| 4.4 不同植物生长调节剂对郁金香切花脯氨酸、MDA 含量和产生速率的影响 |
| 4.4.1 不同植物生长调节剂对郁金香切花脯氨酸含量的影响 |
| 4.4.1.1 不同浓度 PHDC 对郁金香切花脯氨酸含量的影响 |
| 4.4.1.2 不同浓度 DA-6 对郁金香切花脯氨酸含量的影响 |
| 4.4.1.3 不同浓度 DCPTA 对郁金香切花脯氨酸含量的影响 |
| 4.4.1.4 不同浓度 BR 对郁金香切花脯氨酸含量的影响 |
| 4.4.1.5 不同浓度 KT-30 对郁金香切花脯氨酸含量的影响 |
| 4.4.1.6 不同浓度 TA 对郁金香切花脯氨酸含量的影响 |
| 4.4.2 不同植物生长调节剂对郁金香切花 MDA 含量的影响 |
| 4.4.2.1 不同浓度 PHDC 对郁金香切花 MDA 含量的影响 |
| 4.4.2.2 不同浓度 DA-6 对郁金香切花 MDA 含量的影响 |
| 4.4.2.3 不同浓度 DCPTA 对郁金香切花 MDA 含量的影响 |
| 4.4.2.4 不同浓度 BR 对郁金香切花 MDA 含量的影响 |
| 4.4.2.5 不同浓度 KT-30 对郁金香切花 MDA 含量的影响 |
| 4.4.2.6 不同浓度 TA 对郁金香切花 MDA 含量的影响 |
| 4.4.3 不同植物生长调节剂对郁金香切花 O_2 产生速率的影响 |
| 4.4.3.1 不同浓度 PHDC 对郁金香切花 O_2 产生速率的影响 |
| 4.4.3.2 不同浓度 DA-6 对郁金香切花 O_2 产生速率的影响 |
| 4.4.3.3 不同浓度 DCPTA 对郁金香切花 O_2 产生速率的影响 |
| 4.4.3.4 不同浓度 BR 对郁金香切花 O_2 产生速率的影响 |
| 4.4.3.5 不同浓度 KT-30 对郁金香切花 O_2 产生速率的影响 |
| 4.4.3.6 不同浓度 TA 对郁金香切花 O_2 产生速率的影响 |
| 4.5 不同植物生长调节剂对郁金香切花 SOD 和 CAT 活性的影响 |
| 4.5.1 不同植物生长调节剂对郁金香切花 SOD 活性的影响 |
| 4.5.1.1 不同浓度 PHDC 对郁金香切花 SOD 活性的影响 |
| 4.5.1.2 不同浓度 DA-6 对郁金香切花 SOD 活性的影响 |
| 4.5.1.3 不同浓度 DCPTA 对郁金香切花 SOD 活性的影响 |
| 4.5.1.4 不同浓度 BR 对郁金香切花 SOD 活性的影响 |
| 4.5.1.5 不同浓度 KT-30 对郁金香切花 SOD 活性的影响 |
| 4.5.1.6 不同浓度 TA 对郁金香切花 SOD 活性的影响 |
| 4.5.2 不同植物生长调节剂对郁金香切花 CAT 活性的影响 |
| 4.5.2.1 不同浓度 PHDC 对郁金香切花 CAT 活性的影响 |
| 4.5.2.2 不同浓度 DA-6 对郁金香切花 CAT 活性的影响 |
| 4.5.2.3 不同浓度 DCPTA 对郁金香切花 CAT 活性的影响 |
| 4.5.2.4 不同浓度 BR 对郁金香切花 CAT 活性的影响 |
| 4.5.2.5 不同浓度 KT-30 对郁金香切花 CAT 活性的影响 |
| 4.5.2.6 不同浓度 TA 对郁金香切花 CAT 活性的影响 |
| 5 结论与讨论 |
| 5.1 不同植物生长调节剂对郁金香切花形态和生理指标影响探讨 |
| 5.2 不同植物生长调节剂对郁金香切花保鲜及机理探讨 |
| 5.2.1 PHDC 对郁金香切花保鲜及机理探讨 |
| 5.2.2 DA-6 对郁金香切花保鲜及机理探讨 |
| 5.2.3 DCPTA 对郁金香切花保鲜及机理探讨 |
| 5.2.4 BR 对郁金香切花保鲜及机理探讨 |
| 5.2.5 KT-30 对郁金香切花保鲜及机理探讨 |
| 5.2.6 TA 对郁金香切花保鲜及机理探讨 |
| 5.3 结论 |
| 参考文献 |
| 缩略词表 |
| ABSTRACT |
（10）壳聚糖及其衍生物的保鲜功能应用进展（论文提纲范文）
| 1 壳聚糖及其衍生物的特性 |
| 1.1 保湿性 |
| 1.2 抗菌、杀菌性 |
| 1.2.1 相对分子质量的影响 |
| 1.2.2 脱乙酰度的影响 |
| 1.2.3 质量浓度和p H的影响 |
| 1.2.4 抗菌机制 |
| 2 果蔬及鲜切花的保鲜原理 |
| 2.1 果蔬保鲜原理 |
| 2.2 鲜切花保鲜原理 |
| 3 壳聚糖在果蔬保鲜方面的应用 |
| 3.1 延缓果蔬变色 |
| 3.2 延长果蔬保鲜期 |
| 3.3 减少果实细胞膜的膜脂过氧化 |
| 4 壳聚糖在鲜切花保鲜方面的应用 |
| 4.1 涂膜保鲜 |
| 4.2 瓶插液保鲜 |
| 5 结语 |
四、壳聚糖保鲜液对唐菖蒲切花保鲜的影响（论文参考文献）
- [1]芍药切花采后保鲜技术研究[D]. 陈国伟. 吉林农业大学, 2021
- [2]保鲜剂、瓶插液pH和冷藏处理对八仙花切花采后品质的影响[D]. 李媛. 西北农林科技大学, 2021(01)
- [3]羧甲基壳聚糖对切花菊瓶插保鲜的效果[J]. 王茹华,张启发,李晔,吴瑕,雷旭,孙帅楠. 北方园艺, 2018(15)
- [4]绣球切花采后保鲜技术的研究[D]. 杨景雅. 云南大学, 2018(01)
- [5]两种菌发酵液对非洲菊保鲜及压花花色影响的研究[D]. 王青青. 华南农业大学, 2016(03)
- [6]3种保鲜剂对鲜切花束的保鲜效果[J]. 刘柳姣,梁耀平,卢明,黎金玲,陈春燕,刘婷婷. 农业研究与应用, 2015(05)
- [7]鲜切花化学保鲜剂的研究进展[J]. 曹立波,陈海霞. 湖南农业科学, 2015(05)
- [8]保鲜剂对山茶花切花保鲜效果的研究[J]. 韩琴,于勇杰,张晶,戴智慧,倪穗. 中国野生植物资源, 2015(01)
- [9]不同植物生长调节剂对郁金香切花保鲜效果及机理研究[D]. 文雨婷. 河南农业大学, 2014(03)
- [10]壳聚糖及其衍生物的保鲜功能应用进展[J]. 王婷,李树安,张珍明,齐家娟,赵红博,王璇. 化工时刊, 2013(10)